一型糖尿病实验动物模型构建:
胰腺中的胰岛β细胞变性和坏死,分泌的胰岛素不足。
诱导方法一:STZ诱导糖尿病模型。注射前用0.05mol/L柠檬酸(pH4.5)配成2%的STZ溶液,新鲜使用。大鼠糖尿病STZ的剂量为40~75mg/kg(静脉注射或腹腔注射)。小鼠对此药敏感性较差,常用量为100~200mg/kg(静脉注射或腹腔注射)。
诱导方法二:四氧嘧啶糖尿病动物模型四氧嘧啶糖一次腹腔注射150~200mg/kg或静脉注射40~100mg/kg。用药后2~3小时后出现初期高糖,持续6~12小时后进入低血糖期,动物出现痉挛,24小时后一般为持续性高糖期,β细胞呈现不可逆性坏死,发生糖尿病。
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蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂,血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤,脑动、静脉畸形,血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此,蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处,造模时可同时作为参考。
英瀚斯熟练掌握蛛网膜下腔出血造模,及其他动物模型。
复制方法 :健康大鼠,雌雄不拘,体重为250~350g。将钓鱼线剪成长约50mm,并在18mm处作标记,酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定,剃除颈部毛发,手术区域皮肤消毒。颈正中切口,分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉,结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉,并游离颈外动脉主干,沿着颈内动脉暴露翼腭动脉,在颈外动脉残端放一丝线,使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹,同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口,将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧,除去颈内动脉的动脉夹,继续将丝线沿着颈内动脉插入,直至感到有阻力,这时稍用力再插入1.0~1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 浙江承接实验动物模型实验常规实验动物模型制作。
氯化锂诱导大鼠癫痫模型实验动物模型
造模方法癫痫是一种以大脑局部细胞突发性的异常放电并向周围组织扩散为特征的大脑功能障碍,同时伴随暂时性运动、感觉、意识及自主神经功能异常。临产表现为强直阵挛。现在常用的急性化学致痫模型机制均是作用于神经元,通过对CNS递质的作用来诱发癫痫。大鼠腹腔注射氯化锂(LiCl)(127mg/kg,溶于水)进行诱发,24h后腹腔注射溴甲东莨菪碱(1mg/kg),30min后再以匹罗卡品(40mg/kg)腹腔注射,癫痫发作在注射匹罗卡品10到30分钟后开始。如果癫痫发作持续时间30min以上的给予10%水合氯醛3ml/kg腹腔注射以中止发作,如果没有效果,可以反复注射10%水合氯醛直至发作停止。
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双转基因实验动物模型。利用基因打靶技术培育出的APP/PS-1双转基因鼠,在3月龄时出现学习记忆障碍、Aβ增多和形成SP,6月龄时即可出现严重的学习记忆力衰退、认知功能障碍,神经元变性和突触丢失等多种AD病理特性。对AD 病理特征Aβ和SP方面的研究主要采用APP/PS-1双转基因鼠。但其外源性基因表达不够稳定性、动物价格高。
APP/PS1/Tau 三转因模型。APP/PS1/Tau 三转基因小鼠模型是由APPSwe、PS1、TauP301L基因系突变建立的,首先在皮质区和出现Aβ异常沉积、SP 和NFTs 形成,随后海马区也逐渐出现 Aβ沉积、SP和NFTs,以及突触丢失、神经元变性AD临床病理表现。APP/PS1/Tau三转基因小鼠模型是目前与AD 病理特征接近的转基因动物模型,但其外源性基因表达稳定性较差、造模较困难且造价高。 大鼠实验动物模型都有哪些?
精神分裂症实验动物模型,英瀚斯生物小编为您介绍。旷场行为测试主要用于衡量动物的自发活动性和探索新异事物的行为,二者分别用动物在旷场测试中的水平运动距离和直立次数来衡量。有研究表明,慢性MK-801给药(NMDA受体拮抗剂)能诱导大鼠自发活动性的改变,自发活动距离的增加或减少与给药剂量及测试时间有关。在社会隔离建立的拟精神分裂症动物模型中,隔离组大鼠表现出旷场自发活动性的明显的增加。旷场自发活动性的增加与精神分裂症的阳性症状密切相关。实验动物模型,常见问题汇总。浙江承接实验动物模型实验
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肝切除实验动物模型造模方法:大小鼠的肝叶形状和大小不同。因此,切除每个肺叶需要特别注意其独特的形状和血管位置。左外侧叶很容易切除,因为它有一个狭窄的包含门静脉和肝静脉的蒂,并且不与下腔静脉旁肝相连。然而,如果切除***于切除左侧肝外叶(30%切除模型),则必须在肝左门区分离左侧正中门静脉和伴随的肝动脉。
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由于正中叶在腔静脉周围有一个较宽的半基部,切除该叶需要在距腔静脉3mm的距离处进行几次夹持。单纯结扎肝叶的宽基部切除术有很高的风险导致腔静脉收缩和残端肝组织损伤,因为大量结扎容易导致剩余肝组织变形。由于右上叶位于腔静脉上,基部非常宽,并向背侧延伸至右腔静脉旁肝组织,因此技术上**难切除。切除需要小心地将夹钳放置在离腔静脉3毫米的距离处,并使用4或5条穿刺缝线,以避免损伤残端和腔静脉旁肝组织(图6)。由于约70%的下腔静脉旁组织由右上门静脉的一个分支供应,这种潜在的损伤可能对小的残肝非常重要。 浙江承接实验动物模型实验