测定血清中的某些酶，如CK，离体(采集血液)后很容易失活。失活的原因是酶活性中心的活性基因巯基(一SH)被氧化造成的。只有通过适当的还原作用才能重新开始。如CK—NAC检测试剂盒即含有CK活化剂，名为N一乙酰半胱氨酸。实验研究证明，NAC对血清中已失活的CK活化过程约需180 S。这就是CK测定为什么要延迟时间较长的理论依据。在AST，ALT采用IFCC推荐方法测定时需要磷酸吡哆醛预活化。需要强调：含有活化剂的生化试剂，其测定酶活性的结果要高些。检测试剂盒控制洗刷量和洗刷次数的另一种方法是参与过量的洗刷液。乙酸消化液(清洗液)
检测试剂盒实验注意事项有哪些？正式试验时，应分别以阳性对照与阴性对照控制试验条件，待检样品应作一式二份，以保证实验结果的准确性。有时本底较高，说明有非特异性反应，可采用羊血清、兔血清或BSA等封闭。在实验中，进行各项实验条件的选择是很重要的，其中包括：固相载体的选择：许多物质可作为固相载体，如聚氯乙烯、聚苯乙烯、聚丙酰胺和纤维素等。其形式可以是凹孔平板、试管、珠粒等。目前常用的是40孔聚苯乙烯凹孔板。不管何种载体，在使用前均可进行筛选：用等量抗原包被，在同一实验条件下进行反应，观察其显色反应是否均一性，据此判明其吸附性能是否良好。包被抗体（或抗原）的选择：将抗体（或抗原）吸附在固相载体表面时，要求纯度要好,吸附时一般要求PH在9.0～9.6之间。吸附温度，时间及其蛋白量也有一定影响,一般多采用4℃18～24小时。蛋白质包被的浓度需进行滴定：即用不同的蛋白质浓度（0.1、1.0和10μg／ml等）进行包被后，在其它试验条件相同时，观察阳性标本的OD值。选择OD值大而蛋白量少的浓度。对于多数蛋白质来说通常为1～10μg／ml。乙酸消化液(清洗液)定量取用液体时，用量筒或移液管。
试剂盒操作注意事项：使用前，先检查机器所有紧固件是否拧紧，皮带是否张紧。 主轴运转方向必须符合防护罩上所示箭头方向，否则将损坏机器，并可能造成人身伤害。 检查电器是否完整。检查机器粉碎室内有无金属等硬性杂物，否则会打坏，影响机器运转。物料在粉碎前一定要检查纯度，不允许有金属硬杂物混入，以免打坏引起燃烧等事故。机器上的油杯应经常注入润滑油，保证机器正常运转。停机前停止加料，如不继续使用，要清理机内物。定期检查同筛网是否损坏，如有损坏，应立即更换。
检测试剂盒检测成果分析办法:如果呈现规范曲线的线性欠好，或平行性欠好(双孔对照孔的OD值不同很大)，或呈现跳孔的现象，可能引起的原因有酶标板孔间彼此污染、洗板后未能尽快进行下一步操作、添加样品或其它试剂时操作的办法不对、孵育位置避光性不佳或盖板膜没有密封好使得水分蒸腾、酶标板孔问参加的试剂量不同，相对应的解决办法是加样时请当心勿将液体溅人另一孔中，人工洗板时也请当心，勿将洗涤液溅人另一微孔中、在洗板后及时进行下一步操作、添加试剂时请悬空滴入，牢记勿将头接触到板孔内，吸取不同试剂瓶中的液体时就要替换一次头、确认孵育环境不透光，盖板膜将酶标板密封好、运用已校正过的微量加样器，如将次参加液体时头上留有一滴的液体滴下，那么将今后头上留有的液体也滴下，以保证参加液体体积的一致性。液体试剂可以减少某些药物的刺激性。
微生物的培养特征是指微生物培养在培养基上所表现出的群体形态和生长情况。一般可用斜面、液体和半固体培养基来检验不同微生物的培养特征。它们培养在斜面培养基上，可以呈丝线状、刺毛状、串珠状、疏展状、树枝状或假根状（图Ⅶ-6）。生长在液体培养基内，可以呈混浊、絮状、粘液状、形成菌膜、上层清晰而底部显沉淀状。穿刺培养在半固体培养基中，可以沿接种线向四周蔓延；或只沿线生长；也可上层生长得好，甚至连成一片，底部很少生长；或底部长得好，上层甚至不生长。利用微生物的培养特征，可以作为它们的种类鉴定和识别纯培养是否污染的参考。氨苄青霉素溶液配置：加入40ml灭菌水，充分混合溶解之后定容至50ml。乙酸消化液(清洗液)
科研实验中试剂取用应注意事项：滴瓶上的滴管不能用水冲洗，也不能交叉使用。乙酸消化液(清洗液)
严控反应时间。反应时间过长，酶失活；反应时间过短，酶结合物不能与血清中的微生物抗原抗体充分结合，生成物结构松散不牢固，容易洗掉，都可能造成假阴性。注意检测试剂盒保存期，过保存期的试剂不能使用。评估试剂的实用性。试剂的稳定与否，对准确率的高低到头重要。在试剂启用前，应进行阴、阳对照及样品反复比照试验，判定试剂符合要求后方可使用。严格掌握显色时间。显色时间过短，加入终止液反应终止后，底物结合物的量过少，易出现假阴性。超过显色要求时间后显色，应判为假阳性，这可能与试剂本身有关。加显色剂后立即显色，不可报阳性，这可能是本底显色的结果。乙酸消化液(清洗液)