HE染色石蜡和冰冻切片样本的处理,样品处理:a.对于石蜡切片:二甲苯中脱蜡5-10分钟;换用新鲜的二甲苯,再脱蜡5-10分钟;无水乙醇5分钟;90%乙醇2分;70%乙醇2分钟;蒸馏水2分钟.b.对于冰冻切片:蒸馏水2分钟。c对于培养细胞:用4%多聚甲醛固定10分钟以上。蒸馏水洗涤2分钟。换用新鲜的蒸馏水,再洗涤2分钟。苏木素伊红(HE)染色对于上述处理好的样品:苏木素染色液染色5-10分钟(可以根据染色结果和要求调整时间)。浸自来水中冲洗去多余的染色液,约10分钟。蒸馏水再洗涤一遍(数秒钟)。95%乙醇5秒。伊红染色液染色30秒-2分钟(可以根据染色结果和要求调整时间)。此时,如果需要直接观察,可以用70%乙醇洗涤2次。如需脱水、透明后封片按后续步骤进行,70%乙醇洗涤后仍可按照后续步骤进行脱水、透明和封片处理。HE染色注意事项以及常规的流程解析。黑龙江比较好的HE染色分析
HE染色反蓝的原理:苏木素染液,细胞核内的染色质主要是去氧核糖核酸(DNA),DNA的双螺旋结构中,两条链上的磷酸基向外,带负电荷,呈酸性,很容易与带正电荷的苏木素精碱性染料以离子或氢键结合而被染色。苏木精在碱性溶液中呈蓝色,所以细胞核被染成蓝色。 分化:苏木素染色之后,用水洗去未结合在细胞上的染液,但是在细胞核中结合过多的染料和细胞浆中吸附的染料必须用分化液1%盐酸酒精脱去,才能保证细胞核和细胞浆染色的分明,把这个过程称为染色的分化作用。因酸能破坏苏木素的醌型结构,使色素与组织解离,分化不可过度。蓝化:分化之后苏木素在酸性条件下处于红色离子状态,在碱性条件下处于蓝色离子状态,而呈蓝色,所以分化之后用水洗去酸而中止分化,再用弱碱性水使苏木精染上的细胞核变呈蓝色,称蓝化作用,一般多用自来水浸洗即可变蓝,也可用温水(50度温水比较好)变蓝。黑龙江比较好的HE染色分析HE染色小攻略技巧分析。
HE染色法,。苏木精染液为碱 ,主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色 ;伊红为酸染料 ,主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。而线粒体用HE染色不可见,活细胞通常要求活细胞近似无色线粒体需要用健那绿来染色,再在高倍镜下观察。从人或动物新鲜尸体上取下块(一般厚度不超过0.5厘米)投入预先配好的固定液中(10%福尔马林,Bouin氏固定液等)使、细胞的蛋白质变凝固,以防止细胞后的自溶或细菌的分解,从而保持细胞本来的形态结构。一般用由低浓度到高浓度酒精作脱水剂,逐渐脱去块中的水份。再将块置于既溶于酒精,又溶于石蜡的透明剂二甲苯中透明,以二甲苯替换出块的中酒精,才能浸蜡包埋。
HE染色样本组织固定与切片:首先将组织样本进行常规的石蜡包埋。在模具中加入液态石蜡,将待包埋的组织样本放入石蜡中,确保组织位置规整。补充少许液态的石蜡后,进行降温冷冻,使石蜡变为固态达到组织固定的效果,然后使用石蜡切片机进行切片,厚度在4-8um左右。将切完后的组织切片放入载玻片上使用40℃温水浸泡使组织充分伸展。组织样本脱蜡:将待测组织样本切片放于二甲苯中,充分浸泡10min,浸泡完后更换二甲苯继续浸泡10min,目的是使用二甲苯将切片中的石蜡溶解,这样可以在进行染液染色的时候,染液可以充分进入组织种,同时,二甲苯还可以起到透明的作用,使切片更容易观察。HE染色的实验目的以及实验结果分析。
HE染色在**染色中的应用,小细胞肺*是肺*中分化程度比较低、恶性程度比较高的一种恶性**,生长迅速,转移较早,五年存活率*为1%-2%,预后非常差。其小细胞肺***细胞HE染色的特征,主要表现为组织结构,包括巢状、小梁状、实性片状,常有菊形团形成,*巢周围的瘤细胞呈栅栏状排列,*细胞较小,一般小于三个静止的淋巴细胞,呈圆形、卵圆形或短梭形,胞质稀少,胞界不清,核染色质呈细颗粒状,核仁缺乏或不明显,核分裂象每十个高倍视野大于十一个,常见大片状坏死。海马组织HE染色如何观察。黑龙江比较好的HE染色分析
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HE染色等常规染色,组化或是荧光优先推荐做石蜡切片。原因:石蜡切片对组织的形态保存比冰冻切片好,并且对抗原基本无影响。脂质染色(油红O染**odipy染色,尼罗红染色)必须做冰冻切片,不能做石蜡切片。以下染色必须要新鲜或冷冻组织冰冻切片:ROS染**-半乳糖甘酶染色,ATP染色,胆固醇染色。如果标本已经放在-80°冰箱冷冻了之后又想要做石蜡切片,将标本取出来千万不要解冻直接放于固定液内固定(在固定液内边解冻边固定)。组织形态结构保存完好顺序:新鲜组织立即投入固定液内固定石蜡切片>组织-80°冷冻后投入固定液内固定石蜡切片>新鲜组织立即投入固定液内固定冰冻切片>组织-80°冷冻后直接冰冻切片。黑龙江比较好的HE染色分析